Untersuchungen zu Enzymen der Rosmarinsäurebiosynthese aus Zellkulturen von Anthoceros crispulus
- Art: Diplomarbeit
- Autor: Martina Heim
- Abgabedatum: Februar 1998
- Umfang: 139 Seiten
- Dateigröße: 6,3 MB
- Note: 1,3
- Institution / Hochschule: Heinrich-Heine-Universität Düsseldorf Deutschland
- ISBN (eBook): 978-3-8324-8647-1
-
ISBN (Paperback) :
978-3-8324-8647-1 P - ISBN (CD) :978-3-8324-8647-1 CD
- Sprache: Deutsch
- Prämierung:
- Arbeit zitieren: Heim, Martina Februar 1998: Untersuchungen zu Enzymen der Rosmarinsäurebiosynthese aus Zellkulturen von Anthoceros crispulus, Hamburg: Diplomica Verlag
- Schlagworte: pflanzliche Sekundärstoffe, Anthoceros crispulus, Phenylalanin Amonium-Lyase, Hydroxyphenylpyruvat Reduktase, Tyvosin Amintransferase
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Diplomarbeit von Martina Heim
Einleitung:
Rosmarinsäure ist ein typischer Naturstoff der Lamiaceae und Boraginaceae. Neuere Untersuchungen zeigen jedoch, dass dieser Naturstoff auch in anderen Pflanzenfamilien zu finden ist, darunter in den Lamiaceen und Boraginaceen nicht-direkt verwandten Farnen der Gattung Blechnum und in den Hornmoosen (Anthocerotaceae). Die Hornmoose bilden zusammen mit den Laub- und Lebermoosen die Abteilung der Moose (Bryophyta), die evolutionär gesehen an der Schwelle zwischen Thallophyten und Kormophyten stehen.
Die genaue Stellung der Hornmoose wird heute noch diskutiert; sie könnten als evolutionäre Reliktgruppe oder auch als Übergangsgruppe zu den höheren Landpflanzen eingeordnet werden. Umso interessanter ist der Aspekt, dass die Hornmoose denselben Naturstoff, Rosmarinsäure, bilden und akkumulieren wie Lamiaceae und Boraginaceae. Dies wirft die Frage auf, ob die Enzymatik der Biosynthese der Rosmarinsäure in den beiden Pflanzengruppen gleich und möglicherweise evolutionär verwandt sind.
In dieser Arbeit werden einige bereits bekannte Enzyme des Rosmarinsäurebiosyntheseweges (in Zellkulturen der Lamiaceae Coleus blumei gut charakterisiert und auch bereits in Anthoceros crispulus nachgewiesen) in Zellkulturen von Anthoceros crispulus näher untersucht. Dabei werden die Phenylalanin Ammoniun-Lyase (PAL) und die Hydroxyphenylpyruvat Reduktase (HPPR) charakterisiert. Die Tyrosin Aminotransferase (TAT), die die Transaminierung von Tyrosin zu 4-Hydroxyphenylpyruvat unter Einsatz des Aminoakzeptors 2-Oxoglutarat mit Entstehung von Glutamat katalysiert, wurde im Rahmen der Kulturcharakterisierung nachgewiesen. Die Hydroxyzimtsäure: CoALigase konnte nicht reproduzierbar gemessen werden.
Die PAL setzt Phenylalanin unter Freisetzung von NH3 zu t-Zimtsäure um. Für die PAL wurden die wichtigsten Enzymcharakteristika (wie Abhängigkeit von der Proteinkonzentration und Temperatur, pH-Optimum in verschiedenen Puffern, Fällungsbereich bei Ammoniumsulfatfällung, Lagerfähigkeit bei -20°C) mit Rohextrakten und gefälltem Protein als Enzymquelle ermittelt. Darüber hinaus wurden die Substratsättigungskurve und der Km-Wert für Phenylalanin bestimmt.
Die HPPR reduziert Hydroxyphenylpyruvat mit Hilfe von NAD(P)H zu Hydroxyphenyllactat. Die Charakterisierung dieses Enzyms wurde ebenfalls durchgeführt mit Proteinrohextrakten und Ammoniumsulfat-gefälltem Protein. Hier wurden im Wesentlichen dieselben Enzym-Charakteristika bestimmt wie für die PAL. Hierbei wurden zwei Substrate eingesetzt: 4-Hydroxyphenylpyruvat (pHPP) und 3,4-Dihydroxyphenylpyruvat (DHPP). Mit pHPP wurden durchweg geringere Enzymaktivitäten gemessen. Ebenfalls wurden zwei Reduktionsäquivalente verwendet (NADH, NADHPH), wobei mit NADH größere Umsatzraten erzielt wurden. Für pHPP und DHPP wurden dieselben Sättigungskonzentrationen und Km-Werte erzielt.
Weiterhin wurden im Rahmen der Kulturcharakterisierung der Suspensionskultur von Anthoceros crispulus Wachstums- und Medienparameter (in CB2- und CB4-Medium), sowie die Akkumulation von Rosmarinsäure und „Anthoceros-Substanz“ und die spezifischen Aktivitäten von PAL, TAT und HPPR bestimmt. Im Gegensatz zu Suspensionskulturen von Coleus blumei akkumuliert Anthoceros crispulus in CB2-Medium mit bis zu 6% des Zelltrockengewichtes mehr Rosmarinsäure als im CB4-Medium. PAL und TAT zeigten ihre höchsten Aktivitäten in den ersten Tagen der Kulturperiode, wogegen die HPPR kein ausgeprägtes Aktivitätsmaximum aufwies.
Inhaltsverzeichnis:
| 1. | Einleitung | 1 |
| 1.1 | Vorkommen und Funktion pflanzlicher Sekundärstoffe | 1 |
| 1.1.1 | Pflanzliche Naturstoffe bei Moosen (Bryophyta) | 3 |
| 1.2 | Pflanzliche Zellkulturen | 5 |
| 1.2.1 | In vitro-Kulturen von Moosen (Bryophyta) | 6 |
| 1.3 | Rosmarinsäure | 7 |
| 1.3.1 | Biosyntheseweg der Rosmarinsäure | 8 |
| 1.4 | Anthoceros crispulus | 10 |
| 1.5 | Nachzuweisende Enzyme des Rosmarinsäurebiosyntheseweges | 12 |
| 1.5.1 | Phenylalanin Ammonium-Lyase (PAL) | 12 |
| 1.5.2 | Hydroxyphenylpyruvat Reduktase (HPPR) | 13 |
| 1.5.3 | Tyrosin Aminotransferase (TAT) | 14 |
| 1.6 | Zielsetzung dieser Arbeit | 15 |
| 2. | Material und Methoden | 16 |
| 2.1 | Pflanzenmaterial | 16 |
| 2.1.1 | Kulturbedingungen | 16 |
| 2.2 | Herstellung der Enzymextrakte | 19 |
| 2.2.1 | Gewinnung von Rohextrakt (Standardaufarbeitung) | 19 |
| 2.2.2 | Ammoniumsulfatfällung der Proteine | 20 |
| 2.3 | Bestimmung der Proteinkonzentration | 21 |
| 2.4 | Hochleistungs-Flüssigkeits-Chromatographie (HPLC) | 22 |
| 2.5 | Bestimmung der Enzymaktivitäten | 22 |
| 2.5.1 | Phenylalanin Ammonium-Lyase (PAL) | 22 |
| 2.5.1.1 | Nachweis des Reaktionsproduktes der PAL mittels HPLC | 23 |
| 2.5.2 | Hydroxyphenylpyruvat Reduktase (HPPR) | 23 |
| 2.5.3 | Tyrosin Aminotransferase (TAT) | 25 |
| 2.5.3.1 | Photometrischer TAT-Test | 25 |
| 2.5.3.2 | HPLC-Nachweis des Reaktionsproduktes der TAT | 27 |
| 2.6 | Charakterisierung der Enzyme | 28 |
| 2.6.1 | Phenylalanin Ammonium-Lyase | 28 |
| 2.6.1.1 | Proteinabhängigkeit der PAL | 28 |
| 2.6.1.2 | pH-Optimum der PAL | 28 |
| 2.6.1.3 | Vergleich der Enzymaktivitäten in Borsäure-Borax und Glyzin-NaOH-Puffer | 28 |
| 2.6.1.4 | Temperaturoptimum der PAL | 28 |
| 2.6.1.5 | Fällungsbereiche der PAL bei fraktionierter Ammoniumsulfatfällung | 29 |
| 2.6.1.6 | Gefrierbeständigkeit der PAL | 29 |
| 2.6.2 | Hydröxyphenylpyruvat Reduktase | 29 |
| 2.6.2.1 | Zeitabhängigkeit der HPPR | 29 |
| 2.6.2.2 | Proteinabhängigkeit der HPPR | 29 |
| 2.6.2.3 | pH-Optimum der HPPR | 30 |
| 2.6.2.4 | Temperaturabhängigkeit der HPPR | 30 |
| 2.6.2.5 | Fällungsbereiche der HPPR bei fraktionierter Ammoniumsulfatfällung | 31 |
| 2.6.2.6 | NADPH als Reduktionsäquivalent | 31 |
| 2.6.2.7 | Gefrierbeständigkeit der HPPR | 31 |
| 2.7 | Bestimmung der Km Werte | 31 |
| 2.7.1 | Bestimmung der Km-Werte für die PAL | 32 |
| 2.7.2 | Bestimmung der Km Werte für die HPPR | 32 |
| 2.8 | Charakterisierung der Suspensionskultur von Anthoceros crispulus im Kulturverlauf | 33 |
| 2.8.1 | Wachstumsparameter | 33 |
| 2.8.1.1 | Frischgewicht der Zellen (FG) | 33 |
| 2.8.1.2 | Trockengewicht der Zellen (TG) | 33 |
| 2.8.2 | Mediumsparameter | 33 |
| 2.8.2.1 | Bestimmung des pH-Wertes | 33 |
| 2.8.2.2 | Bestimmung der Leitfähigkeit | 34 |
| 2.8.2.3 | Bestimmung des Zuckergehaltes | 34 |
| 2.8.2.4 | Bestimmung des Nitratgehaltes | 34 |
| 2.8.2.5 | Bestimmung des Phosphatgehaltes | 36 |
| 2.9 | Extraktion der Rosmarinsäure (RA) | 37 |
| 2.10 | Enzymaktivitäten im Kulturverlauf | 39 |
| 2.10.1 | PAL-Aktivitäten im Kulturverlauf | 39 |
| 2.10.2 | HPPR-Aktivitäten im Kulturverlauf | 39 |
| 2.10.3 | TAT-Aktivitäten im Kulturverlauf | 39 |
| 2.11 | Berechnungen der Enzymaktivitäten | 39 |
| 3. | Ergebnisse | 41 |
| 3.1 | Charakterisierung der Phenylalanin Ammonium-Lyase | 41 |
| 3.1.1 | Abhängigkeit der PAL-Aktivität von der Proteinkonzentration | 41 |
| 3.1.2 | pH-Optimum der PAL | 42 |
| 3.1.3 | Vergleich der Enzymaktivitäten in 0,1 M Glyzin-NaOH-Puffer pH 9,0 und Borsäure-Borax-Puffer pH 8,8 | 44 |
| 3.1.4 | Temperaturoptimum der PAL | 44 |
| 3. 1.5 | Fällungsbereiche der PAL bei fraktionierter Ammoniumsulfatfällung | 45 |
| 3.1.6 | Gefrierbeständigkeit der PAL | 47 |
| 3.1.7 | Bestimmung des Km Wertes für Phenylalanin | 48 |
| 3.1.8 | Nachweis der Zimtsäure mittels HPLC | 52 |
| 3.2 | Charakterisierung der Hydroxyphenylpyruvat Reduktase (HPPR) | 52 |
| 3.2.1 | Zeitlicher Verlauf der HPPR-Reaktion | 52 |
| 3.2.2 | Proteinabhängigkeit der HPPR | 53 |
| 3.2.3 | pH-Optimum der HPPR | 57 |
| 3.2.4 | Temperaturoptimum der HPPR | 58 |
| 3.2.5 | Fällungsbereich der HPPR bei fraktionierter Ammoniumsulfatfällung | 59 |
| 3.2.6 | NADPH als Reduktionsäquivalent | 61 |
| 3.2.7 | Gefrierstabilität der HPPR | 61 |
| 3.2.8 | Bestimmung der Km Werte der HPPR | 62 |
| 3.2.8.1 | Km Wert für 3,4-Dihydroxyphenylpyruvat (DHPP) | 62 |
| 3.2.8.2 | Km Wert für p-Hydroxyphenylpyruvat (pHPP) | 65 |
| 3.2.8.3 | Km Wert für NADH | 68 |
| 3.2.8.4 | Km Wert für NADPH | 70 |
| 3.3 | Charakterisierung der Suspensionskultur von Anthoceros crispulus im Kulturverlauf | 72 |
| 3.3.1 | Wachstumsparameter | 72 |
| 3.3.2 | Mediumsparameter | 74 |
| 3.3.2.1 | pH-Wert | 74 |
| 3.3.2.2 | Leitfähigkeit | 75 |
| 3.3.2.3 | Zuckerkonzentration im Medium | 77 |
| 3.3.2.4 | Nitratgehalt im Medium | 78 |
| 3.3.2.5 | Phosphatgehalt im Medium | 79 |
| 3.3.3 | Proteingehalte der Anthoceros crispulus-Zellen | 81 |
| 3.3.4 | Rosmarinsäuregehalt der Zellen (RA-Gehalt) | 82 |
| 3.3.5 | Gehalt der Zellen an „Anthoceros-Substanz“ (ACS) | 84 |
| 3.3.6 | Enzymaktivitäten im Kulturverlauf | 86 |
| 3.3.6.1 | Aktivität der PAL in Bezug auf das Frischgewicht | 86 |
| 3.3.6.2 | Spezifische Aktivität der PAL | 88 |
| 3.3.6.3 | Aktivität der TAT in Bezug auf das Frischgewicht | 89 |
| 3.3.6.4 | Spezifische TAT-Aktivität | 91 |
| 3.3.6.5 | HPPR-Aktivität in Bezug auf das Frischgewicht | 92 |
| 3.3.6.6 | Spezifische Enzymaktivität der HPPR | 93 |
| 4. | Diskussion | 95 |
| 4.1 | Charakterisierung der Phenylalanin Ammonium-Lyase | 95 |
| 4.2 | Charakterisierung der Hydroxyphenylpyruvat Reduktase | 100 |
| 4.3 | Charakterisierung der Suspensionskultur von Anthoceros crispulus im Kulturverlauf | 104 |
| 5. | Zusammenfassung | 112 |
| 6. | Anhang | 115 |
| 6.1 | Abkürzungen | 115 |
| 6.2 | Abbildungs- und Tabellenverzeichnis | 116 |
| 6.3 | Chemikalien und Verbrauchsmaterial | 120 |
| 6.4 | Geräte | 124 |
| 7. | Literaturverzeichnis | 126 |
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http://www.diplom.de/ean/9783832486471
Arbeit zitieren:
Heim, Martina Februar 1998: Untersuchungen zu Enzymen der Rosmarinsäurebiosynthese aus Zellkulturen von Anthoceros crispulus, Hamburg: Diplomica Verlag
Schlagworte:
pflanzliche Sekundärstoffe, Anthoceros crispulus, Phenylalanin Amonium-Lyase, Hydroxyphenylpyruvat Reduktase, Tyvosin Amintransferase



