Stabilität hoher Fluorchinolonresistenz bei Enterobakterien ohne Selektionsdruck
- Art: Dissertation / Doktorarbeit
- Autor: Ansgar Schulte
- Abgabedatum: August 2001
- Umfang: 113 Seiten
- Dateigröße: 6,9 MB
- Note: 1,0
- Institution / Hochschule: Rheinische Friedrich-Wilhelms-Universität Bonn Deutschland
- ISBN (eBook): 978-3-8324-6285-7
-
ISBN (Paperback) :
978-3-8324-6285-7 P - ISBN (CD) :978-3-8324-6285-7 CD
- Sprache: Deutsch
- Prämierung: Die Dissertation erhielt 2001 den "Aventis Travel Award" und wurde 2002 mit dem "PEG-Doktoranden- Stipendium" ausgezeichnet.
- Arbeit zitieren: Schulte, Ansgar August 2001: Stabilität hoher Fluorchinolonresistenz bei Enterobakterien ohne Selektionsdruck, Hamburg: Diplomica Verlag
- Schlagworte: Fitness, Escherichia coli, Antibiotika, Proteomics, Ciprofloxacin
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Dissertation / Doktorarbeit von Ansgar Schulte
Beide Auszeichnungen wurden auf Vorschlag der Paul-Ehrlich-Gesellschaft für Chemotherapie e.V. verliehen. Der Aventis Travel Award 2001 war ein Stipendium zum Besuch der 40th ICAAC, Toronto, Kanada, gestiftet von Aventis Pharma GmbH.
Zusammenfassung:
Als Präventivmaßnahme zur Eindämmung der Resistenz gegen Antibiotika wurde 1995 von der WHO vorgeschlagen, den Antibiotikaeinsatz weltweit zu reduzieren, um damit der Selektion von resistenten Bakterien entgegenzuwirken. Grundlage dieser WHO-Empfehlung ist die Annahme, daß die Fitness von Antibiotika-resistenten Mutanten im Vergleich zu sensitiven Stämmen signifikant verringert ist und diese daher beim Wegfall des Selektionsdrucks die resistenten Stämme verdrängen.
Die klinische Fluorchinolonresistenz bei Escherichia coli ist eine Folge der Akkumulation von Mutationen in den Genen der Zielstrukturen Gyrase und Topoisomerase IV. Des weiteren spielt oftmals eine Veränderung der mar-regulierten Expression von Porinen und Effluxpumpen eine Rolle. Bei in vitro selektierten E. coli konnte, im Zusammenhang mit der Resistenzentwicklung, eine erhebliche Verminderung der Fitness festgestellt werden. Neben einer verlängerten Generationszeit, wurde die Abnahme des negativen Superspiralisierungsgrads der DNA, sowie der Verlust der Typ 1 Fimbrienexpression festgestellt. Dies steht im Gegensatz zu den Befunden bei klinischen Isolaten.
Um die Frage zu klären, ob der Fitnessverlust der Bakterien die WHO-Annahme bestätigt, oder, ob eventuell kompensatorische Mutationen diesen Fitnessverlust ausgleichen können, wurde in dieser Arbeit ein Fitness-Kompensationsexperiment durchgeführt. Es bestand darin, die Ciprofloxacin-resistenten Zellen über 300 Generationen ohne Antibiotikaselektionsdruck in vitro zu kultivieren, dabei setzten sich die fittesten Mutanten durch. Es wurde somit auf Wachstumsgeschwindigkeit und Lebensfähigkeit selektiert.
Es konnte gezeigt werden, daß eine Generationszeitverkürzung bei Mutanten der Generation 300 auf Wildtyp-Niveau, mit der Wiederherstellung des DNA-Superspiralisierungsgrads einherging. Gleichzeitig blieb die klinische Chinolonresistenz erhalten. Die bekannten Resistenzmutationen in gyrA, parC und marR blieben unverändert. Zusätzlich war bei den untersuchten Mutanten der Generation 300 die Fähigkeit zur Typ 1 Fimbrienexpression wiederhergestellt.
Entsprechend dem Mehrschrittmechanismus der zur hohen Chinolonresistenz und zur phänotypischen Ausprägung des Fitnessverlustes führte, konnte in dieser Arbeit auch ein Mehrschrittmechanismus der Kompensation nachgewiesen werden. Die phänotypischen Unterschiede zwischen den Mutanten der Generation 300 bestand neben der 2min kürzeren Generationszeit der später identifizierten Stämme (MasIII300-16s und MasIV300-32s), in deren Verringerung der MHK-Werte gegenüber Ciprofloxacin, Tetracyclin und Chloramphenicol, sowie in der erhöhten Chinolonaufnahme. Diese Revertierung des sogenannten MAR-Phänotyps bei den Mutanten MasIII300-16s und MasIV300-32s fand wie erwartet ohne Veränderung der Deletion in marR statt. Statt dessen führte die DNA-Sequenzanalyse des marCORAB-Locus der Mutanten zur Identifizierung von kompensatorischen Mutationen im marA-Gen.
Falls die nachgewiesenen Mutationen in marA zu einer Inaktivierung des Transkriptionsaktivators marA führen, könnten diese nicht nur zu einer erhöhten Chinolonaufnahme und dadurch zu einer niedrigeren Ciprofloxacin-MHK führen, sondern zusätzlich durch die vermehrte Expression der OmpF-Porine zu einer verbesserten Nährstoffversorgung der Zelle beitragen. Dies würde die um 2min verkürzte Generationszeit der Mutanten MasIII300-16s und MasIV300-32s gegenüber den Mutanten MasIII300 und MasIV300 erklären.
Aufgrund der Fitnesskompensation wird die von der WHO in Genf empfohlene Reduzierung des Antibiotika-Einsatzes wegen des Zusammenhangs zwischen der Häufigkeit von resistenten Krankheitserregern und der Intensität der Antibiotikaanwendung zwar eine hilfreiche Maßnahme sein, wird aber wahrscheinlich, auch aufgrund der in dieser Arbeit gezeigten Ergebnisse bei E. coli, den einmal in Gang gesetzten weltweiten Prozeß der Resistenzselektion nicht umkehren können.
Inhaltsverzeichnis:
| Inhalt | ||
| 1. | Einleitung | 4 |
| 1.1 | Bakterienfitness | 5 |
| 1.2 | Typ 1 Fimbrien | 7 |
| 1.3 | Enterobacteriaceae | 9 |
| 1.4 | Fluorchinolone | 10 |
| 1.4.1 | Wirkmechanismus der Fluorchinolone | 11 |
| 1.4.2 | DNA-Superspiralisierung | 12 |
| 1.4.3 | Chinolonresistenz | 14 |
| 1.5 | Zielsetzung | 17 |
| 2. | Material und Methoden | 18 |
| 2.1 | Material | 18 |
| 2.1.1 | Bakterienstämme | 18 |
| 2.1.2 | Eukaryontenzellen | 19 |
| 2.1.3 | Vektoren | 19 |
| 2.1.4 | Oligonukleotide | 20 |
| 2.1.5 | DNA-Größenmarker | 22 |
| 2.1.6 | Nährmedien | 22 |
| 2.1.7 | Chemotherapeutika | 22 |
| 2.1.8 | Chemikalien | 23 |
| 2.1.9 | Enzyme | 24 |
| 2.1.10 | Puffer und Lösungen | 25 |
| 2.1.11 | Geräte und Material | 26 |
| 2.2 | Methoden | 27 |
| 2.2.1 | Konzentrationsbestimmung von Oligonukleotiden | 27 |
| 2.2.2 | Polymerase-Ketten-Reaktion | 27 |
| 2.2.3 | PCR des regulatorischen Bereichs der Typ1 Fimbrien | 29 |
| 2.2.4 | Isolierung von Plasmid-DNA | 30 |
| 2.2.5 | Agarose-Gelelektrophorese | 31 |
| 2.2.6 | Aufreinigung der DNA mit dem QIAquick-PCR Purification Kit | 32 |
| 2.2.7 | Spektralphotometrische Konzentrationsbestimmung von DNA | 32 |
| 2.2.8 | Sequenzierung von DNA | 33 |
| 2.2.9 | Enzymatische Modifikation von DNA | 34 |
| 2.2.10 | Herstellung kompetenter Bakterien und Transformation | 35 |
| 2.2.11 | Konjugation | 35 |
| 2.2.12 | Identifizierung der Bakterien durch Mikronaut E | 36 |
| 2.2.13 | Bestimmung der minimalen Hemmkonzentration | 37 |
| 2.2.14 | Aufnahme von Ciprofloxacin in die Bakterienzellen | 37 |
| 2.2.15 | Keimzahlbestimmung | 39 |
| 2.2.16 | Bestimmung der Generationszeit | 39 |
| 2.2.17 | Fitness-Kompensationsexperiment | 40 |
| 2.2.18 | Direkter Wachstumsvergleich in einer Kultur | 40 |
| 2.2.19 | Mannose-sensible Saccharomyces cerevisiae Agglutination | 41 |
| 2.2.20 | Präparation der -Laktamase | 41 |
| 2.2.21 | Bestimmung der spezifischen -Laktamase-Aktivität | 42 |
| 2.2.22 | Proteinbestimmung nach Lowry | 43 |
| 2.2.23 | Bestimmung des DNA-Superspiralisierungsgrads über (-Laktamase-Expression | 43 |
| 2.2.24 | Bestimmung des DNA-Superspiralisierungsgrads über Chloroquingele | 45 |
| 2.2.25 | Proteomanalyse mittels 2D-Elektrophorese | 46 |
| 2.2.25.1 | Probenvorbereitung | 46 |
| 2.2.25.2 | Isoelektrische Fokussierung | 46 |
| 2.2.25.3 | SDS-Polyacrylamid-Gelelektrophorese | 47 |
| 2.2.25.4 | Coomassiefärbung | 48 |
| 2.2.25.5 | Silberfärbung | 49 |
| 2.2.25.6 | Bildauswertung der 2D-Elektrophoresegele | 49 |
| 2.2.25.7 | Peptide Mass Fingerprinting Analyse mit MALDI-MS | 50 |
| 3. | Ergebnisse | 51 |
| 3.1 | Fitnesskompensation | 51 |
| 3.1.1 | Bestimmung der Generationszeit ausgewählter Stämme | 51 |
| 3.1.2 | Fitness-Kompensationsexperiment | 53 |
| 3.1.3 | Generationszeitbestimmung als Berechnungsgrundlage | 54 |
| 3.2 | Charakterisierung der Mutanten nach 300 Generationen | 54 |
| 3.2.1 | Identifizierung der Keime mittels Micronaut-E-System | 54 |
| 3.2.2 | Bestimmung der Generationszeit | 55 |
| 3.2.3 | Direkter Wachstumsvergleich in einer Kultur über 10,5 Tage | 56 |
| 3.2.4 | MHK-Bestimmung der Mutanten nach 300 Generationen | 60 |
| 3.2.5 | MHK-Bestimmung mittels Micronaut-S-System | 61 |
| 3.2.6 | Bestimmung der Resistenzmutationen im Vergleich zu den Elternzellen | 62 |
| 3.3 | Multiple Antibiotika-Resistenz | 63 |
| 3.3.1 | Bestimmung des MAR-Phänotyp | 63 |
| 3.3.2 | Messung des Ciprofloxacingehaltes in der Bakterienzelle | 64 |
| 3.3.3 | Sequenzvergleich des marCORAB-Locus | 66 |
| 3.4 | Untersuchung der Adhärenzeigenschaften der E. coli-Isolate | 67 |
| 3.4.1 | Mannose-sensible Saccharomyces cerevisiae Agglutination (MSSA) | 67 |
| 3.4.2 | PCR des regulatorischen Bereichs der Typ 1 Fimbrien | 68 |
| 3.5 | Untersuchung des DNA-Superspiralisierungsgrads | 70 |
| 3.5.1 | Untersuchung des DNA-Superspiralisierungsgrads mittels Expression der (-Laktamase | 70 |
| 3.5.2 | Untersuchung des Superspiralisierungsgrads mit Chloroquingelen | 72 |
| 3.5.3 | DNA-Sequenzanalyse der Topoisomerasen und DNA-Bindeproteine | 73 |
| 3.5.4 | Überprüfung der Mutation in gyrA an Position 678 | 74 |
| 3.6 | Proteomanalyse mittels 2D-Elektrophorese | 74 |
| 3.6.1 | Proteinexpressions-Unterschiede der Mutanten | 75 |
| 3.6.2 | Sequenzanalyse des Protein-codierenden Gens (yqgE) | 77 |
| 3.6.3 | Sequenzanalyse des Transkriptionsaktivators fadR | 77 |
| 4. | Diskussion | 78 |
| 5. | Zusammenfassung | 95 |
| 6. | Literaturverzeichnis | 97 |
| 7. | Anhang | 106 |
| 7.1 | Lebenslauf | 106 |
| 7.2 | Danksagungen | 107 |
| 7.3 | Abkürzungsverzeichnis | 108 |
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Link zur Arbeit:
http://www.diplom.de/ean/9783832462857
Arbeit zitieren:
Schulte, Ansgar August 2001: Stabilität hoher Fluorchinolonresistenz bei Enterobakterien ohne Selektionsdruck, Hamburg: Diplomica Verlag
Schlagworte:
Fitness, Escherichia coli, Antibiotika, Proteomics, Ciprofloxacin



