Enzyme der Coniferinbiosynthese in Zellkulturen von Linum album
- Art: Diplomarbeit
- Autor: Bettina Schönell
- Abgabedatum: November 1996
- Umfang: 153 Seiten
- Dateigröße: 18,3 MB
- Note: 1,0
- Institution / Hochschule: Heinrich-Heine-Universität Düsseldorf Deutschland
- ISBN (eBook): 978-3-8324-0042-2
-
ISBN (Paperback) :
978-3-8324-0042-2 P - ISBN (CD) :978-3-8324-0042-2 CD
- Sprache: Deutsch
- Prämierung:
- Arbeit zitieren: Schönell, Bettina November 1996: Enzyme der Coniferinbiosynthese in Zellkulturen von Linum album, Hamburg: Diplomica Verlag
- Schlagworte: Coniferin, Liguane, Linum album, pflanzliche Zellkulturen, Podophyllotoxin
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Diplomarbeit von Bettina Schönell
Zusammenfassung:
Podophyllotoxin ist ein Pflanzeninhaltsstoff, der als Ausgangssubstanz zur Synthese der beiden wichtigen Antitumormittel Etoposid und Teniposid dient. Podophyllotoxin kann zwar chemisch synthetisiert werden, doch ist dies nicht ökonomisch. Aus diesem Grund wird Podophyllotoxin auch heute noch aus Pflanzen, insbesondere aus Podophyllum hexandrum, gewonnen. Da diese Pflanze bisher nicht erfolgreich angebaut werden kann, ist eine Sammlung aus Wildbeständen im Himalaya notwendig. Dies hat zu einer Bedrohung dieser Art, geführt, und man ist sehr an alternativen Rohstoffquellen interessiert. Eine solche Alternative wäre die Gewinnung von Podophyllotoxin mittels Zellsuspensionskulturen, z. B. mit in unserer Arbeitsgruppe vorhandenen Kulturen von Linum album, die Podophyllotoxin zu bilden vermögen.
Bisher sind unsere Kenntnisse zur Biosynthese von Podophyllotoxin, insbesondere auf enzymatischer Ebene, noch sehr unvollständig. Bekannt ist, daß über den allgemeinen Phenylpropanstoffwechsel Coniferylalkohol gebildet wird. Zwei Moleküle Coniferylakohol werden in einer oxidativen Reaktion zu (+)-Pinoresinol gekoppelt und anschließend über mehrere Schritte in Podophyllotoxin und verwandte Lignane überführt.
Im Laufe der Kulturperiode akkumuliert in den Zellkulturen von Linum album zunächst Coniferylalkohol, dessen Konzentration im weiteren verlauf der Kultivierung mit dem Anstieg der Lignane, insbesondere mit der Akkumulation von Podophyllotoxin, wieder abnimmt.
Aufgabe von Frau Schönell war es, die wichtigsten an der Biosynthese von Coniferylalkohol beteiligten Enzyme in den Zellkulturen von Linum album nachzuweisen, zu charakterisieren, ihre Aktivitäten im Kulturverlauf zu bestimmen und zum Gehalt der Zellen an Coniferylalkohol und Lignanen in Beziehung zu setzen.
Frau Schönell gelang es in kurzer Zeit, die wichtigsten an der Biosynthese des Coniferylakohols beteiligten Enzyme wie Phenylalanin Ammonium-Lyase, Zimtsäure 4-Hydroxylase, Hydroxyzimtsäure: CoA-Ligase und Zimtalkohol Dehydrogenase in den Zellen zu detektieren. Sie verifizierte die entsprechenden Reaktionsprodukte und optimierte die jeweiligen Enzymtests. Sie bestimmte die Kenndaten der untersuchten Enzyme, wie pH- und Temperaturoptima, maximale Umsatzraten und die Km-Werte für die Substrate. Diese erwiesen sich als sehr ähnlich zu denen, wie sie für die entsprechenden Enzyme aus anderen Pflanzenarten bekannt sind. Außerdem verfolgte Sie die Enzymaktivitäten über den Kulturverlauf. Es stellte sich heraus, daß die Aktivitäten dieser Enzyme sehr gut mit dem Verlauf der Akkumulation von Coniferylalkohol bzw. seines Glukosides, dem Coniferin, korrelieren. Während der Akkumulation von Lignanen wie dem Podophyllotoxin haben diese Enzyme ihre Aktivitätsmaxima überschritten. Des bedeutet, daß die untersuchten Enzyme nicht die Akkumulation der Lignane, wohl jedoch die von Coniferin kontrollieren.
Inhaltsverzeichnis:
| 1. | Einleitung | 1 |
| 1.1 | Pflanzliche Sekundärstoffe | 1 |
| 1.2 | Pflanzliche Zellkulturen | 3 |
| 1.3 | Lignane | 4 |
| 1.3.1 | Allgemeines | 4 |
| 1.3.2 | Podophyllotoxin (Ptox) | 5 |
| 1.4 | Linum album | 7 |
| 1.5 | Biosynthese des Podophyllotoxins | 9 |
| 1.6 | Ausgewählte Enzyme des Biosyntheseweges | 13 |
| 1.6.1 | Phenylalanin Ammonium-Lyase (PAL) | 13 |
| 1.6.2 | Zimtsäure 4-Hydroxylase (CAH) | 13 |
| 1.6.3 | Hydroxyzimtsäure: CoA-Ligase (4CL) | 14 |
| 1.6.4 | Zimtalkohol Dehydrogenase (CAD) | 15 |
| 1.7 | Zielsetzung dieser Arbeit | 16 |
| 2. | Material und Methoden | 17 |
| 2.1 | Pflanzenmaterial | 17 |
| 2.2 | Übersicht über den Aufbau dieser Arbeit | 20 |
| 2.3 | Herstellung der Enzymextrakte | 21 |
| 2.3.1 | Zimtalkohol Dehydrogenase und Phenylalanin Ammonium-Lyase | 21 |
| 2.3.2 | Zimtsäure 4-Hydroxylase | 21 |
| 2.3.3 | Hydroxyzimtsäure: CoA-Ligase | 22 |
| 2.4 | Bestimmung der Proteinkonzentration | 22 |
| 2.5 | Bestimmung der Enzymaktivitäten | 23 |
| 2.5.1 | Phenylalanin Ammonium-Lyase | 23 |
| 2.5.2 | Zimtsäure 4-Hydroxylase | 24 |
| 2.5.3 | Hydroxyzimtsäure: CoA-Ligase | 24 |
| 2.5.4 | Zimtalkohol Dehydrogenase (Rückreaktion) | 26 |
| 2.5.5 | Berechnung der Enzymaktivitäten | 28 |
| 2.6 | Versuch der Optimierung der Extraktionsbedingungen | 29 |
| 2.7 | Charakterisierung der Enzyme | 29 |
| 2.7.1 | Phenylalanin Ammonium-Lyase | 29 |
| 2.7.1.1 | Proteinabhängigkeit der PAL | 29 |
| 2.7.1.2 | pH-Optimum der PAL | 30 |
| 2.7.1.3 | Temperaturoptimum der PAL | 30 |
| 2.7.2 | Zimtsäure 4-Hydroxylase | 30 |
| 2.7.2.1 | Proteinabhängigkeit der CAH | 30 |
| 2.7.2.2 | pH-Optimum der CAH | 30 |
| 2.7.2.3 | Temperaturoptimum der CAH | 30 |
| 2.7.2.4 | Optimum der DTT-Konzentration für die CAH | 31 |
| 2.7.3 | Hydroxyzimtsäure: CoA-Ligase | 31 |
| 2.7.3.1 | Proteinabhängigkeit der 4CL | 31 |
| 2.7.3.2 | pH-Optimum der 4CL | 31 |
| 2.7.3.3 | Temperaturoptimum der 4CL | 31 |
| 2.7.3.4 | Optimum der DTT-Konzentration für die 4CL | 31 |
| 2.7.4 | Zimtalkohol Dehydrogenase | 32 |
| 2.7.4.1 | Proteinabhängigkeit der CAD | 32 |
| 2.7.4.2 | pH-Optimum der CAD | 32 |
| 2.7.4.3 | Temperaturoptimum der CAD | 32 |
| 2.7.5 | Bestimmung der Km-Werte | 32 |
| 2.7.5.1 | Bestimmung der Km-Werte für die Substrate der PAL | 33 |
| 2.7.5.2 | Bestimmung der Km-Werte für die Substrate der CAH | 33 |
| 2.7.5.3 | Bestimmung der Km-Werte für die Substrate der 4CL | 33 |
| 2.7.5.4 | Bestimmung der Km-Werte für die Substrate der CAD | 33 |
| 2.8 | Extraktion der Lignane aus den Zellen | 34 |
| 2.9 | Hochleistungs-Flüssigkeits-Chromatographie (HPLC) | 34 |
| 2.9.1 | Nachweis des Reaktionsproduktes der CAH-Reaktion mittels HPLC | 35 |
| 2.9.2 | Nachweis von Podophyllotoxin, 5-Methoxypodophyllotoxin und Desoxypodophyllotoxin | 36 |
| 2.9.3 | Nachweis von Coniferaldehyd, Coniferylalkohol und Coniferin | 36 |
| 2.10 | Charakterisierung der Suspensionskultur von Linum album im Kulturverlauf | 37 |
| 2.10.1 | Wachstumsparameter | 37 |
| 2.10.2 | Mediumsparameter | 38 |
| 2.10.3 | Aktivitäten der Enzyme im Kulturverlauf | 44 |
| 2.10.3.1 | Vereinfachte Aufarbeitung für alle untersuchten Enzyme | 44 |
| 2.10.3.2 | Spezifische Aktivität der PAL im Kulturverlauf | 44 |
| 2.10.3.3 | Spezifische Aktivität der CAH im Kulturverlauf | 44 |
| 2.10.3.4 | Spezifische Aktivität der 4CL im Kulturverlauf | 44 |
| 2.10.3.5 | Spezifische Aktivität der CAD (Rückreaktion) im Kulturverlauf | 45 |
| 2.11 | Identifizierung der Reaktionsprodukte der enzymatisch katalysierten Reaktionen | 46 |
| 2.11.1 | Identifizierung des Reaktionsproduktes der PAL | 46 |
| 2.11.2 | Identifizierung des Reaktionsproduktes der CAH | 46 |
| 2.11.3 | Identifizierung der Reaktionsprodukte der 4CL | 46 |
| 2.11.4 | Identifizierung der Reaktionsprodukte der CAD | 47 |
| 3. | Ergebnisse | 48 |
| 3.1 | Identifizierung der Reaktionsprodukte der enzymatisch katalysierten Reaktionen | 48 |
| 3.2 | Charakterisierung der Enzyme | 50 |
| 3.2.1 | Charakterisierung der Phenylalanin Ammonium-Lyase | 50 |
| 3.2.1.1 | Optimierung der Extraktionsbedingungen | 50 |
| 3.2.1.2 | Stabilität der PAL | 50 |
| 3.2.1.3 | Abhängigkeit der Aktivität der PAL von der Proteinkonzentration | 50 |
| 3.2.1.4 | pH-Optimum der PAL | 51 |
| 3.2.1.5 | Temperaturoptimum der PAL | 51 |
| 3.2.1.6 | Bestimmung des Km-Wertes für Phenylalanin | 53 |
| 3.2.2 | Charakterisierung der Zimtsäure 4-Hydroxylase | 55 |
| 3.2.2.1 | Optimierung der Aufarbeitung | 55 |
| 3.2.2.2 | Stabilität der CAH | 55 |
| 3.2.2.3 | Abhängigkeit der CAH Aktivität von der Proteinkonzentration | 55 |
| 3.2.2.4 | pH-Optimum der CAH | 56 |
| 3.2.2.5 | Temperaturoptimum der CAH | 56 |
| 3.2.2.6 | Optimum der DTT-Konzentration im Reaktionsansatz | 58 |
| 3.2.2.7 | Bestimmung des Km-Wertes für NADPH | 58 |
| 3.2.2.8 | Bestimmung des Km-Wertes für Zimtsäure | 60 |
| 3.2.3 | Charakterisierung der Hydroxyzimtsäure: CoA-Ligase | 63 |
| 3.2.3.1 | Nachweis der enzymatischen Reaktion | 63 |
| 3.2.3.2 | Optimierung der Extraktionsbedingungen | 63 |
| 3.2.3.3 | Abhängigkeit der 4CLAktivität von der Proteinkonzentration | 64 |
| 3.2.3.4 | pH-Optimum der 4CL | 64 |
| 3.2.3.5 | Temperaturoptimum der 4CL | 66 |
| 3.2.3.6 | Optimum der DTT-Konzentration im Reaktionsansatz | 66 |
| 3.2.3.7 | Bestimmung des Km-Wertes für p-Cumarsäure | 67 |
| 3.2.3.8 | Bestimmung des Km-Wertes für Ferulasäure | 69 |
| 3.2.3.9 | Bestimmung des Km-Wertes für Kaffeesäure | 71 |
| 3.2.3. 10 | Bestimmung des Km-Wertes für Coenzym A | 73 |
| 3.2.3. 11 | Bestimmung des Km-Wertes für ATP | 75 |
| 3.2.4 | Charakterisierung der Zimtalkohol Dehydrogenase (Rückreaktion) | 77 |
| 3.2.4.1 | Optimierung der Extraktionsbedingungen | 78 |
| 3.2.4.2 | Stabilität der CAD | 78 |
| 3.2.4.3 | Proteinabhängigkeit der CAD | 78 |
| 3.2.4.4 | pH-Optimum der CAD | 78 |
| 3.2.4.5 | Temperaturoptimum der CAD | 79 |
| 3.2.4.6 | Bestimmung des Km-Wertes für NADP+ | 81 |
| 3.2.4.7 | Bestimmung des Km-Wertes für Coniferylalkohol | 83 |
| 3.2.4.8 | Bestimmung des Km-Wertes für Sinapylalkohol | 85 |
| 3.3 | Charakterisierung der Suspensionskultur von Linum album im Kulturverlauf | 88 |
| 3.3.1 | Wachstumsparameter | 88 |
| 3.3.2 | Mediumsparameter | 89 |
| 3.3.3 | Enzymaktivitäten | 94 |
| 3.3.3.1 | Proteingehalt der Linum album-Zellen | 94 |
| 3.3.3.2 | Spezifische Aktivität der PAL im. Kulturverlauf | 95 |
| 3.3.3.3 | Spezifische Aktivität der CAH im Kulturverlauf | 95 |
| 3.3.3.4 | Spezifische Aktivität der 4CL im Kulturverlauf | 96 |
| 3.3.3.5 | Spezifische Aktivität der CAD (Rückreaktion) im Kulturverlauf | 97 |
| 3.3.4 | Lignangehalt der Zellen | 98 |
| 3.3.5 | Gehalte an Coniferaldehyd, Coniferylalkohol und Coniferin | 99 |
| 4. | Diskussion | 102 |
| 4.1 | Charakterisierung der Enzyme | 102 |
| 4.1.1 | Charakterisierung der Phenylalanin Ammonium-Lyase | 102 |
| 4.1.2 | Charakterisierung der Zimtsäure 4-Hydroxylase | 104 |
| 4.1.3 | Charakterisierung der Hydroxyzimtsäure: CoA-Ligase | 105 |
| 4.1.4 | Charakterisierung der Zimtalkohol Dehydrogenase (Rückreaktion) | 111 |
| 4.2 | Charakterisierung der Suspensionskultur von Linum album im Kulturverlauf | 115 |
| 5. | Zusammenfassung | 124 |
| 6. | Literaturverzeichnis | 127 |
| 7. | Anhang | 137 |
| 7.1 | Verzeichnis der verwendeten Abkürzungen | 137 |
| 7.2 | Chemikalien und Verbrauchsmaterial | 138 |
| 7.3 | Geräte | 141 |
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http://www.diplom.de/ean/9783832400422
Arbeit zitieren:
Schönell, Bettina November 1996: Enzyme der Coniferinbiosynthese in Zellkulturen von Linum album, Hamburg: Diplomica Verlag
Schlagworte:
Coniferin, Liguane, Linum album, pflanzliche Zellkulturen, Podophyllotoxin



